Palabras clave
inhibición
patógeno de frutas
bioactivos de frutas
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Resumen
El nance (Byrsonima crassifolia) es conocido por sus diversas aplicaciones en la alimentación, la medicina y la farmacología. Sin embargo, debido a su limitada industrialización y distribución, alrededor del 60% de la producción total se pierde. Este estudio tiene como objetivo utilizar el fruto de nance como una fuente valiosa de extractos acuosos para controlar al hongo Colletotrichum asianum. La investigación implica cuantificar e identificar a los compuestos fenólicos (CF) en los extractos del fruto y realizar pruebas in vitro para evaluar el crecimiento micelial, la esporulación y la germinación. Los CF clave identificados fueron el ácido gálico, la catequina y la galocatequina. Se emplearon cuatro tratamientos con diferentes concentraciones de extracto acuoso (0%, 1%, 0.5% y 0.1%). La inhibición más notable del crecimiento micelial ocurrió al 0.1%, con un 34.7% ± 1.60. En la prueba de esporulación, la concentración del 1% no solo mostró el menor recuento de esporas a 2.5×105 sino también en la germinación con un 89%. La evaluación del potencial antifúngico en los compuestos bioactivos del nance (B. crassifolia) mostró una significativa eficacia antifúngica in vitro contra C. asianum, un patógeno crítico en el cultivo de mango que causa la antracnosis. Los extractos acuosos de nance muestran su eficacia para ser utilizados como una alternativa ecológica en el tratamiento de la antracnosis en el cultivo de mango.
Citas
Abu-Reidah, I. M., Ali-Shtayeh, M. S., Jamous, R. M., Arráez-Román, D. & Segura-Carretero, A. (2015). HPLC–DAD–ESI-MS/MS screening of bioactive components from Rhus coriaria L. (Sumac) fruits. Food Chemistry, 166, 179–191. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2014.06.011
Ahmadi, S., Ahmadi, G. & Ahmadi, H. (2022). A review on antifungal and antibacterial activities of some medicinal plants. Micro Nano Bio Aspects, 1(1), 10–17. https://doi.org/10.22034/mnba.2022.150563.
Alvarez-Parrilla, E., Rosa, L. A. D. La, Amarowicz, R. & Shahidi, F. (2012). Protective effect of fresh and processed Jalapeño and Serrano peppers against food lipid and human LDL cholesterol oxidation. Food Chemistry, 133(3), 827–834. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2012.01.100.
Alves, G. L. & Franco, M. R. B. (2003). Headspace gas chromatography–mass spectrometry of volatile compounds in murici (Byrsonima crassifolia L. Rich). Journal of Chromatography A, 985(1–2), 297–301. https://doi.org/10.1016/S0021-9673(02)01398-5.
Ansari, M. A., Anurag, A., Fatima, Z. & Hameed, S. (2013). Natural phenolic compounds: a potential antifungal agent. Microb. Pathog. Strateg. Combat. Sci. Technol. Educ., 1, 1189–1195.
Arce-Reynoso, A., Mateos, R., Mendivil, E. J., Zamora-Gasga, V. M. & Sáyago-Ayerdi, S. G. (2023). Bioavailability of bioactive compounds in Hibiscus sabdariffa beverage as a potential anti-inflammatory. Food Research International, 174, 113581. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2023.113581.
Ayala-Soto, F. E., Serna-Saldívar, S. O., García-Lara, S. & Pérez-Carrillo, E. (2014). Hydroxycinnamic acids, sugar composition and antioxidant capacity of arabinoxylans extracted from different maize fiber sources. Food Hydrocolloids, 35, 471–475. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2013.07.004
Balouiri, M., Sadiki, M. & Ibnsouda, S. K. (2016). Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. Journal of Pharmaceutical Analysis, 6(2), 71–79. https://doi.org/10.1016/j.jpha.2015.11.005.
Benzie, I. F. F. & Strain, J. J. (1996). The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239(1), 70–76. https://doi.org/10.1006/abio.1996.0292.
Cortés-Rivera, H. J., Blancas-Benitez, F. J., Romero-Islas, L.C., Gutiérrez-Martinez, P. & González-Estrada, R. R. (2019). In vitro evaluation of residues of coconut (Cocos nucifera L.) aqueous extracts, against the fungus Penicillium italicum. Emirates Journal of Food and Agriculture, 31(8), https://doi.org/613-617. 0.9755/ejfa.2019.v31.i8.1993.
De Silva, D. D., Crous, P. W., Ades, P. K., Hyde, K. D. & Taylor, P. W. J. (2017). Life styles of Colletotrichum species and implications for plant biosecurity. Fungal Biology Reviews, 31(3), 155–168. https://doi.org/10.1016/j.fbr.2017.05.001.
Durán-Castañeda, A. C., Cardenas-Castro, A. P., Pérez-Jiménez, J., Pérez-Carvajal, A. M., Sánchez-Burgos, J. A., Mateos, R. & Sáyago-Ayerdi, S. G. (2023). Bioaccessibility of phenolic compounds in Psidium guajava L. varieties and P. friedrichsthalianum Nied. after gastrointestinal digestion. Food Chemistry, 400, 134046. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2022.134046.
Gautam, A. K., Singh, P. K. & Aravind, M. (2020). Defensive role of plant phenolics against pathogenic microbes for sustainable agriculture. Plant Phenolics in Sustainable Agriculture: Volume 1, 579–594. https://doi.org/10.1007/978-981-15-4890-1_25.
Gutierrez-Martinez, P., Ramos-Guerrero, A., Cabanillas-Beltran, H., Romero-Islas, J. & Cruz-Hernandez, A. (2015). Chitosan as alternative treatment to control postharvest losses of tropical and subtropical fruits. In A. Méndez-Vilas (Ed.), Science within Food: Up-to-date Advances on Research and Educational Ideas (pp. 42–47).
Li, Z. & Jennings, A. (2017). Worldwide regulations of standard values of pesticides for human health risk control: A review. International Journal of Environmental Research and Public Health, 14(7), 826. https://doi.org/10.3390/ijerph14070826.
Lu, W., Shi, Y., Wang, R., Su, D., Tang, M., Liu, Y. & Li, Z. (2021). Antioxidant activity and healthy benefits of natural pigments in fruits: A review. International Journal of Molecular Sciences, 22(9), 4945. https://doi.org/10.3390/ijms22094945.
Luximon-Ramma, A., Bahorun, T. & Crozier, A. (2003). Antioxidant actions and phenolic and vitamin C contents of common Mauritian exotic fruits. Journal of the Science of Food and Agriculture, 83(5), 496–502. https://doi.org/10.1002/jsfa.1365.
Mohammadi, A., Nazari, H., Imani, S. & Amrollahi, H. (2014). Antifungal activities and chemical composition of some medicinal plants. Journal de Mycologie Médicale/Journal of Medical Mycology, 24(2), e1–e8. https://doi.org/10.1016/j.mycmed.2014.02.006.
Montreau, F. R. (1972). Sur le dosage des composés phénoliques totaux dans les vins par la méthode Folin-Ciocalteu. OENO One, 6(4), 397–404. https://doi.org/10.20870/oeno-one.1972.6.4.2071.
Mora, A., Parra, J., Chaverri, J. M. & Arias, M. L. (2013). Determinación de la capacidad antimicrobiana del té verde (Camellia sinensis) contra los agentes potencialmente patógenos Escherichia coli, Salmonella enterica, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, Candida albicans y Aspergillus niger. Archivos Latinoamericanos de Nutrición, 63(3), 247–253.
Morelia-Jiménez, J. A. Y., Montaño-Leyva, B., Blancas-Benitez, F. J., Romero-Islas, L. del C., Gutierrez-Martinez, P., Hernandez-Montiel, L. G., Bautista-Rosales, P. U. & González-Estrada, R. R. (2023). Coconut Mesocarp Extracts to Control Fusarium musae, the Causal Agent of Banana Fruit and Crown Rot. AgriEngineering, 5(4), 2395–2407. https://doi.org/10.3390/agriengineering5040147.
Moreno-Hernández, C. L., Zambrano-Zaragoza, M. L., Velázquez-Estrada, R. M., Sánchez-Burgos, J. A. & Gutierrez-Martinez, P. (2022). Identification of a Colletotrichum species from mango fruit and its in vitro control by GRAS compounds. Revista Mexicana de Ingeniería Química, 21(3), Bio2777–Bio2777.
Ncama, K., Mditshwa, A., Tesfay, S. Z., Mbili, N. C. & Magwaza, L. S. (2019). Topical procedures adopted in testing and application of plant-based extracts as bio-fungicides in controlling postharvest decay of fresh produce. Crop Protection, 115, 142–151. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2018.09.016.
Oulahal, N. & Degraeve, P. (2022). Phenolic-rich plant extracts with antimicrobial activity: an alternative to food preservatives and biocides? Frontiers in Microbiology, 12, 753518. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.753518.
SIAP. (2021). Anuario Estadístico de la Producción Agrícola. (p. 1). Gobierno de México.
Simonetti, G., Brasili, E. & Pasqua, G. (2020). Antifungal activity of phenolic and polyphenolic compounds from different matrices of Vitis vinifera L. against human pathogens. Molecules, 25(16), 3748. https://doi.org/10.3390/molecules25163748.
Sun, J., Chu, Y.-F., Wu, X. & Liu, R. H. (2002). Antioxidant and antiproliferative activities of common fruits. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 50(25), 7449–7454. https://doi.org/10.1021/jf0207530.
Toyoshima, Y., Okubo, S., Toda, M., Hara, Y. & Shimamura, T. (1994). Effect of catechin on the ultrastructure of Trichophyton mentagrophytes, Kansenshogaku zasshi The Journal of the Japanese Association for Infectious Diseases, 68(3), 295–303. https://doi.org/10.11150/kansenshogakuzasshi1970.68.295.
Usia, T., Banskota, A. H., Tezuka, Y., Midorikawa, K., Matsushige, K. & Kadota, S. (2002). Constituents of Chinese propolis and their antiproliferative activities. Journal of Natural Products, 65(5), 673–676. https://doi.org/10.1021/np010486c.
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